在分子生物学研究工作当中,单细胞扩增技术能够解析单个细胞内的核酸信息,帮助科研人员挖掘细胞异质性相关的生物学问题。单细胞扩增试剂盒是开展这类实验的核心工具,不同来源的实验样本,在细胞状态、核酸含量、杂质残留等方面存在明显差异。想要获得稳定可靠的实验结果,需要结合样本本身的特点调整实验操作细节,匹配试剂盒的使用条件,减少实验过程中出现的扩增偏差、产物产量不足等问题。本文结合实验室实际操作经验,梳理各类常见样本的适配思路,为相关实验开展提供参考。
单细胞扩增实验的样本来源十分广泛,常见有组织解离样本、悬浮细胞样本、冷冻保存样本、穿刺微量样本等。各类样本经过前期处理之后,细胞的完整程度、细胞内核酸的完整性都会发生变化,即便使用同一套试剂盒,照搬统一操作流程,也容易出现实验波动。实验人员需要优先关注样本前处理环节,前处理的质量会直接影响后续扩增反应的表现,是适配不同样本的基础。
针对组织解离得到的实体组织单细胞样本,这类样本大多来自动物或者人体实体组织,经过酶解、机械吹打完成细胞分离。组织样本在解离过程中,容易产生细胞碎片、组织残渣,还会残留部分胞外核酸。这些杂质进入扩增体系之后,会干扰反应体系内部的酶促反应,造成扩增效率下降。在样本处理阶段,需要做好细胞过滤与筛选工作,使用合适孔径的筛网去除大块组织碎屑,通过低速离心去除部分细胞碎片。完成细胞分选之后,尽量缩短细胞在缓冲液中的放置时间,避免细胞发生裂解,防止胞内核酸提前释放。挑选单细胞的时候,尽量选择形态完整、轮廓清晰的细胞,避开破碎、皱缩的细胞。在体系配置时,可根据细胞实际状态,适度把控细胞投入的数量,不要盲目追求细胞数量,优先保证单细胞的完整性。
悬浮细胞样本,比如细胞系、外周血分离得到的免疫细胞,这类样本细胞形态均一,细胞状态相对稳定,是单细胞扩增实验中比较容易操作的样本类型。但悬浮细胞同样存在需要留意的细节。部分悬浮细胞容易发生聚集,肉眼观察看似单个细胞,实际是多个细胞粘连在一起,会造成单细胞扩增的结果出现混杂信号。实验操作中,可在细胞悬液制备阶段轻柔吹打,打散细胞团块。对于经过药物处理、刺激诱导后的悬浮细胞,细胞内部核酸状态会发生改变,细胞活力出现差别。这类样本在挑取单细胞之后,不要长时间放置,尽快完成裂解操作,减少核酸降解带来的影响。实验过程中可以设置平行对照,用来判断样本本身带来的实验波动。
冷冻保存的样本,也是科研工作中经常用到的样本类型,包含冷冻组织解离细胞、冻存的原代细胞。冷冻过程会对部分细胞结构造成损伤,即便细胞可以被分选出来,内部核酸也可能存在部分降解。处理这类样本时,要注意冻存样本复苏操作的规范性,复苏完成之后快速进行细胞活性检测,筛选存活状态较好的细胞开展实验。冻存样本不建议反复冻融,一旦完成复苏,需要尽快完成单细胞分选与扩增实验。如果样本中破碎细胞占比偏高,需要增加筛选步骤,舍弃破损细胞,只选取形态完好的细胞进入扩增反应。对于核酸降解程度偏高的样本,在实验操作中可以适当优化裂解步骤的时间,保证细胞内核酸充分释放,同时避免过度裂解引入过多杂质。
微量穿刺样本、稀少细胞样本,这类样本获取难度高,能够得到的细胞数量有限,样本中的杂质占比相对更高。这类样本实验容错空间较小,每一步操作都需要更加谨慎。在样本处理阶段,尽量减少样本转移的次数,降低细胞丢失。分选单细胞的时候,尽量在短时间内完成操作,避免样本长时间暴露在室温环境。配置反应体系的时候,操作尽量轻柔,减少气泡产生,气泡会干扰酶促反应的进行。这类样本建议设置空白对照,区分样本自带杂质与实验操作带来的背景信号。实验结束之后,结合产物的检测结果,判断扩增是否达到实验预期,以此反向调整后续样本处理方式。
除了样本前处理,实验过程中的细节调整同样重要。不同样本进入扩增体系之后,体系内的环境会发生改变,实验人员要结合样本的实际情况,灵活把控裂解、孵育等操作时长,不要死板套用试剂盒说明书的固定流程。每一批次实验,都需要配套设置对照样本,对照可以帮助区分是试剂盒本身的问题,还是样本特性带来的实验差异。
在日常实验中,科研人员也需要做好实验记录,把样本来源、前处理方式、操作调整细节以及最终实验结果完整记录下来。积累不同样本的操作经验,逐步形成适配对应样本的操作习惯。单细胞扩增实验结果受多重因素影响,试剂盒提供标准化的反应基础,而样本本身的特性,需要依靠实验人员结合实际情况进行适配调整。
做好不同样本类型的适配工作,能够降低实验失败概率,提升实验数据的可重复性。分子生物学研究中,样本多样性是常态,只有充分认识各类样本的特点,优化对应的实验操作,才可以更好发挥单细胞扩增技术的作用,为后续的数据分析与生物学机制探究打下扎实的实验基础。